Nhx1 est un antiport vacuolaire de Na+/H+ chez la levure Saccharomyces cerevisiae. Nhx1 joue un rôle important dans le maintien de l’homéostasie ionique du cytoplasme de la cellule. En effet, la mutation du gène NHX1 chez la levure nhx1Δ entraîne une perte de l’homéostasie cellulaire quand les cellules sont cultivées dans un milieu de faible osmolarité.
Ce travail rapporte pour la première fois, et contrairement à la cellule parentale,
que la mutation du gène NHX1 a pour effet une sensibilité du mutant nhx1Δ à une
variété des drogues et des agents cationiques et anioniques lorsque les cellules sont cultivées dans un milieu riche. En outre, dans ces conditions de culture, aucune sensibilité n’a été observée chez le mutant nhx1Δ quand les cellules sont traitées avec différentes concentrations de sel. Nous avons aussi démontré que la sensibilité du mutant nhx1Δ aux différents agents ainsi que la sécrétion de l’enzyme carboxypeptidase Y observé chez ce mutant n’ont pas été restauré lorsque les cellules sont cultivées dans des milieux avec différents pH ou avec différentes concentrations de sel.
Enfin, une analyse génétique a révélé que le mutant nhx1Δ montre un phénotype distinct d’autres mutants qui ont un défaut dans le trafic entre le compartiment pré-vacuolaire et l’appareil de Golgi quand ces cellules sont traitées avec différents agents. Cette analyse prouve que la sensibilité de nhx1Δ aux différents agents n’est pas liée au trafic entre le compartiment pré-vacuolaire et l’appareil de Golgi.
Nhx1 is an intracellular Na+/H+ exchanger localized to the late endosome in
Saccharomyces cerevisiae. It is believed that Nhx1 plays a major role in pH-mediated
vesicle trafficking, as nhx1Δ mutant is defective in maintaining the intracellular pH in the vacuoles and cytoplasm when grown in low osmolarity media.
In this work, we reported novel drug sensitivities of the nhx1Δ mutant to a range
of cationic and anionic agents when cells are grown in rich media. Unlike the low
osmolarity media, the nhx1Δ mutant showed no sensitivity to salt. Furthermore, we
showed that the drug phenotypes of the nhx1Δ mutant, as well as the secretion of the
vacuolar protein carboxypeptidase Y, were not rescued by either altering the pH or salt
concentration. Although, amino acid substitution of the phylogenetically conserved residue Glu355 for Ala (E355A) in Nhx1 resulted in sensitivity to genotoxic drug bleomycin, it was not observed for the non-conserved residue Glu371Ala (E371A).
Moreover, genetic analysis revealed that the nhx1Δ mutant displayed distinct drug
phenotypes in comparison to mutants that are defective in retrograde trafficking from
the prevacuole to the late Golgi, excluding the possibility that the drug sensitivity of the nhx1Δ mutant is related to retrograde trafficking.
