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dc.contributor.advisorWurtele, Hugo
dc.contributor.authorSimoneau, Antoine
dc.date.accessioned2018-05-31T14:42:24Z
dc.date.availableMONTHS_WITHHELD:12fr
dc.date.available2018-05-31T14:42:24Z
dc.date.issued2018-05-10
dc.date.submitted2017-12
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/1866/20234
dc.subjectH3K56acfr
dc.subjectStructure de la chromatinefr
dc.subjectRéponse aux dommages à l’ADNfr
dc.subjectAssemblage de la chromatinefr
dc.subjectTélomèresfr
dc.subjectRéplication de l’ADNfr
dc.subjectStress réplicatiffr
dc.subjectDNA damage responsefr
dc.subjectReplicative stressfr
dc.subjectDNA replicationfr
dc.subjectChromatin structurefr
dc.subjectTelomeresfr
dc.subjectChromatin assemblyfr
dc.subject.otherBiology - Molecular / Biologie - Biologie moléculaire (UMI : 0307)fr
dc.titleLe rôle de la structure de la chromatine naissante dans la réponse au stress réplicatiffr
dc.typeThèse ou mémoire / Thesis or Dissertation
etd.degree.disciplineBiologie moléculairefr
etd.degree.grantorUniversité de Montréal (Faculté de médecine)fr
etd.degree.levelDoctorat / Doctoralfr
etd.degree.namePh. D.fr
dcterms.abstractLa viabilité de chaque organisme dépend de sa capacité à répliquer son génome en conservant son intégrité. Paradoxalement, la réplication de l’ADN est un processus pendant lequel le génome est particulièrement vulnérable à une multitude de génotoxines issues de l’environnement et du métabolisme cellulaire qui peuvent endommager l’ADN. Chez plusieurs espèces, les nucléosomes nouvellement synthétisés durant la phase S comportent des modifications cycliques qui régulent, entre autres, la réponse au stress réplicatif. Notamment, chez Saccharomyces cerevisiae, l’acétylation de la lysine 56 de l’histone H3 (H3K56ac) est ajouté par Rtt109 pendant la réplication et enlevée suite à la duplication du génome par les histones désacétylases de la famille des sirtuines, Hst3 et Hst4. La perturbation du cycle d’acétylation/désacétylation d’H3K56ac mène à des défauts de croissance accompagnés d’hypersensibilité aux génotoxines qui induisent du stress réplicatif, mais les mécanismes sous-jacents à H3K56ac pouvant expliquer ces phénotypes demeurent mal compris. Dans le but d’élucider le rôle d’H3K56ac, nous avons examiné les causes des phénotypes engendrés par une situation où H3K56 est constitutivement acétylé dans un mutant hst3Δ hst4Δ. Nous avons initialement caractérisé les effets sur la réponse aux dommages à l’ADN dans ce contexte et découvert que l’hyperacétylation d’H3K56ac provoque l’apparition de foyers de protéines de réparation ainsi qu’une hyperactivation de la signalisation en réponse aux dommages à l’ADN (SRDA). Nous avons ensuite fait un crible pour identifier des mutants d’histones pouvant supprimer les défauts de croissance d’hst3Δ hst4Δ, ce qui a permis de découvrir que l’acétylation d’H4K16 et la méthylation d’H3K79 sont toxiques en présence d’hyperacétylation d’H3K56. Nos résultats suggèrent que prévenir ces deux modifications améliore la croissance du mutant hst3Δ hst4Δ en réduisant l’activation de Rad53, une kinase clé dans la SRDA. Nous avons subséquemment effectué un crible chimiogénétique pour identifier des gènes dont la mutation sensibilise les cellules à l’hyperacétylation d’H3K56 induite par le nicotinamide (NAM), un inhibiteur pan-spécifique des sirtuines. De cette manière, nous avons identifié que les cellules mutantes pour SLX4 et PPH3, deux gènes impliqués dans la réduction de l’activité de Rad53, sont inviables en présence d’hyperactétylation d’H3K56. Une caractérisation plus poussée a révélé que l’hyperactivation de Rad53 dans le mutant hst3Δ hst4Δ cause des défauts de croissance en inhibant l’activation d’origines de réplication tardives et en perturbant la réponse au stress oxydatif. Le crible a également mené à la découverte que le raccourcissement des télomères sensibilise les cellules au NAM et au stress réplicatif en provoquant la redistribution de l’activation des origines de réplication à travers le génome. En résumé, les résultats présentés dans cette thèse indiquent qu’une composante majeure des phénotypes associés à l’hyperacétylation d’H3K56 provient de l’hyperactivation de la signalisation en réponse aux dommages à l’ADN. Collectivement, nos travaux révèlent de nouveaux mécanismes par lesquels la structure de la chromatine influence la capacité des cellules à répondre au stress réplicatif.fr
dcterms.abstractThe information necessary for every cellular process is encoded in DNA, and the survival of any species requires that it faithfully and successfully replicates this molecule. Paradoxically, it is when cells undergo DNA replication that the integrity of their genome is the most vulnerable to agents that cause DNA damage. As such, cells possess a wide variety of mechanisms that protect genomic integrity, which includes regulation of chromatin structure. In all eukaryotic species studied so far, newly synthesized nucleosomes in S-phase harbor transient modifications that influence, amongst other things, the response to replicative stress. Particularly, in Saccharomyces cerevisiae, histone H3 lysine 56 acetylation (H3K56ac) is added by Rtt109 during DNA replication, and is removed after completion of genome duplication by members of the sirtuin family of histone deacetylases, Hst3 and Hst4. Interestingly, any perturbation of acetylation/deacetylation cycle causes severe growth defects accompanied by an extreme sensitivity to replicative stress-inducing genotoxins. However, the H3K56ac functions underlying these phenotypes are poorly understood. To further understand the role of H3K56ac in maintaining genomic integrity, we examined the phenotypes caused by constitutive hyperacetylation of H3K56, such as in the hst3Δ hst4Δ mutant. We first characterized the effects of H3K56 hyperacetylation on the DNA damage response (DDR), and found that it induces spontaneous and aberrant appearance of DNA repair protein foci, as well as hyperactive DDR signaling. We next performed a screen to identity histone mutations that can suppress the growth defects of hst3Δ hst4Δ mutants, and found that H3K79 methylation and H4K16 acetylation are toxic for cells harboring hyperacetylated H3K56. Our results suggest that preventing the addition of these two modifications improves the growth of hst3Δ hst4Δ mutants by reducing the activity of Rad53, a key kinase for DDR signaling. Hst3 and Hst4 can be inhibited by nicotinamide (NAM), a pan-sirtuin inhibitor, which induces H3K56 hyperacetylation. We performed a chemogenetic screen to identify genes whose mutation confers fitness defects in the presence of nicotinamide (NAM)-induced H3K56 hyperacetylation. Interestingly, amongst the tops hits were mutants for SLX4 and PPH3, two genes encoding proteins involved in the dampening of DDR signaling. By using slx4Δ and pph3Δ cells to probe for the root causes of sensitivity to DDR signaling in cells with constitutive H3K56ac, we found that the defects of hst3Δ hst4Δ mutants are instigated by Rad53 hyperactivity-mediated inhibition of late replication origin firing and crippling of the response to oxidative stress. Intriguingly, this last screen led to the surprising finding that telomere length influences replication origin firing genome-wide. Moreover, our results suggest that cells with short telomeres are sensitive to NAM and replicative stress because of sequestration of origin firing factors to telomeres. In summary, results presented herein indicate that hyperactive DDR signaling is a major component of the extreme phenotypes observed in cells harboring constitutive H3K56ac. Collectively, our work unveils novel mechanisms by which chromatin structure influences cells’ ability to cope with replicative stress.fr
dcterms.languagefrafr


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